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细胞传代培养步骤及传代密度问题解决方案介绍

人阅读 发布时间:2024-01-15 16:12

     因为培养皿的限制,细胞到达一定的密度之后它的生长速度就会放缓,所以为了让细胞保持在对数生长期,保持细胞旺盛的分裂能力。这时候需要进行细胞传代!
    细胞培养的雷比较的多,我遇到过比较的情况。这里可以做慢慢的分析和讨论!先把基本的细胞培养的步骤贴出来!需要注意的是,悬浮细胞和贴壁细胞的传代培养是不一样的。
贴壁细胞传代::
1:对于贴壁细胞来说,它需要把上清去掉,用1-2ML的PBS洗一下细胞,然后用枪吸去洗涤液,然后加入胰酶进行细胞消化。(加入1-2ML的PBS, 我是会贴壁加入到培养皿的边缘,不能直接对着细胞加入PBS,容易把细胞都吹起来。这一步的目的是为了去掉残余的培养基的,残余的培养基会含有血清和一些离子等,不利于接下来的消化。此外,常见的是0.25%的胰酶。一般根据细胞皿的大小加入胰酶,对于10cm的dish,我会加入1ml的胰酶。)
2:放到37摄氏度培养箱30s-1min(我这里处理的是293T细胞,不同的细胞的消化时间是不一样的,需要具体的去查一查,如果消化的好的细胞是会呈现流沙状态的,上下晃动都会随着移动的。)
3:加入含有血清的培养液终止消化,用枪把培养液吹匀。(因为含有血清可以终止胰酶的消化反应,用枪吹培养皿底是为了把残留在底部的细胞吹起来)
4:转移到15ml的离心管中,离心,200g 5-10min(一般我是1000rpm离心3min)
5:去掉上清液,然后用PBS 重悬细胞,加入的PBS的量是10ML。再次离心,去掉上清。
6:加入适量的培养基,把细胞重悬,然后转移到培养皿里面。放入到37摄氏度的5%的二氧化碳培养箱。
悬浮细胞传代:
1:对于悬浮细胞,达到汇合状态时,悬浮培养的细胞会聚集成团块,转动培养瓶时培养基会变得浑浊。(GM12878非常典型,当然了,有的细胞不会聚集成团,比如说K562)
2:可以用台盼蓝溶液+自动细胞计数器或血细胞计数器,确定细胞的密度,计算需要添加的培养基体积,将培养物稀释至建议的接种密度。
3:一般是按比例稀释一下培养基,然后继续传代。(我在传K562的时候,是会1:4的比例去传代,保证细胞密度在1M/ML以下,能达到对数生长期,细胞处于旺盛的分裂期)
4:把细胞放入到37℃,5%的二氧化碳培养箱中,进行培养

传代问题解决方案:
1.传代密度过高

一旦细胞养太久至融合度过高(>90%)才传代,容易使细胞产生老化现象,甚至是堆叠,再消化细胞时不易吹打成单颗细胞,即便再重新铺盘传代,细胞也无法回到原本的特性了。(如:单层细胞,没长满就发生堆叠现象)
解决方案:
尽量避免融合度过高,镜下观察融合度约达到80%即可传代分盘。
细胞融合度:在细胞培养中指的是细胞在培养表面(培养皿/瓶)所占的比例。

2.传代密度过低
哺乳动物贴壁培养细胞,若细胞培养到80-90%密度需要开始传代,在传代接种细胞密度过低,细胞间距离太远,就无法在细胞间产生黏附及通信作用,帮助信号传导并活化细胞;总体细胞量不足,分泌的生长因子浓度会不足以产生利于生长的微环境,以上皆会造成增殖速度迟缓或细胞死亡。
解决方案:
细胞传代时,要进行准确的细胞计数,确保铺盘的密度.


 

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